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药物研发新方法(NAMs)在体外心脏安全性研究中的应用

2026-11-12
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做过 hERG 筛选以后,什么时候还需要看心肌细胞的电活动、钙信号或收缩?单通道检测、人源 iPSC 心肌细胞和心脏类器官提供的是不同层次的证据。选择哪种模型,取决于要观察的是通道电流、细胞功能,还是三维组织中的区域活动。

药物研发中的新方法(NAMs)是什么?

药物研发中的新方法,也称新方法学(New Approach Methodologies,NAMs),包括先进体外实验、计算建模等方法和研究策略。它们旨在提高数据与人体生物学的相关性。在证据充分、用途明确时,可补充传统动物试验的数据,或减少对部分动物试验的依赖。人源细胞和类器官可以是其中的模型,但模型本身不是完整的检测方法,还需要明确暴露条件、测量指标和判读标准。[1]

FDA 在 2025 年发布减少临床前安全性研究中动物试验的路线图,随后于 2026 年 3 月发布 NAMs 指导原则草案,提出按预定用途验证方法。是否适用,取决于模型与所研究风险的相关性、实验可靠性以及结果能否支持预定决策,不取决于模型叫不叫「类器官」。[2]

在心脏方向,ICH E14/S7B 问答(R1)区分了针对特定疑问的后续研究,以及在特定用途下经验证、可用于整合风险评估的替代试验。这两类用途所需的证据不同。下文聚焦研发阶段的体外心肌功能评价,不把探索性检测等同于已获监管认可的替代试验。[3]

人源 iPSC 心肌细胞为什么用于心脏安全性研究?

人诱导多能干细胞(hiPSC)可由人体细胞重编程获得,进一步分化得到心肌细胞,即 hiPSC-CM。与只表达特定通道的细胞不同,hiPSC-CM 中的动作电位反映多种离子电流的共同作用。测量这些细胞的复极、钙瞬变和收缩,可以追问单通道结果没有回答的问题:化合物作用到人源心肌细胞后,整体功能发生了什么变化?[4][3]

人源 iPSC 心肌细胞可按问题选择单细胞或贴壁细胞群。单细胞膜片钳适合记录动作电位波形;细胞群可用电压成像观察电活动和节律,也可结合钙成像、收缩测量来比较给药前后功能。如果需要连续观察,适配的培养体系还可考虑场电位与阻抗检测。阻抗反映与搏动及细胞状态有关的变化,不是直接测得的收缩力。

Blinova 等在一项盲法多中心研究中,用两种 hiPSC-CM 细胞系检测了 28 种化合物,比较复极与节律相关指标。这为该模型的应用提供了研究依据,但不是对任意细胞系、检测条件或待测化合物的普遍验证。细胞批次、培养状态和搏动频率都会影响基线和药物响应;尤其是药物同时改变搏动频率时,不能仅凭动作电位时程延长就断定药物直接作用于复极电流。[5][3]

从人源 iPSC 心肌细胞到类心脏:三维模型多了什么信息?

iPSC 心肌细胞描述的是细胞来源,心脏类器官(cardiac organoids)描述的是三维组织模型。iPSC 来源的心肌细胞既可以二维培养,也可以是三维模型的组成部分。Hofbauer 等在 2021 年报道了一种由人多能干细胞自组织形成、带有腔样结构的类心脏(cardioid)。这是具体的模型设计,不能把所有三维心肌细胞团都视为同一种类器官,也不能把有腔样结构等同于重现了成年心脏。[6]

与二维培养相比,三维模型的价值在于研究空间问题。例如,一个化合物对组织不同区域的钙瞬变影响是否一致?局部活动能否传播到其他区域?如果研究只需要比较候选物对动作电位或收缩的影响,二维模型可能已经能回答问题,并不必然要换成三维。心脏类器官功能检测应先明确样本来源、构建方式、尺寸和可记录范围,再决定哪些指标可以比较。

在类器官中,探针进入组织的程度、成像深度和运动干扰都会影响观察范围。膜片钳记录的是可接近细胞的膜电位;类器官钙成像展示的是可见区域的钙信号。两者都不能直接代表整个组织的电活动,钙信号传播也不等同于直接测得的电传导速度。[3]

hERG、动作电位、钙成像和收缩怎样选?

hERG 筛选针对特定通道电流;人源心肌细胞检测关注多种因素共同作用下的功能变化。判断是否需要补做实验,先明确现有数据解释不了哪个问题,再选择对应指标。[3]

研究问题适用模型检测与指标结果边界
药物是否抑制 hERG 通道电流? 适用的 hERG 通道表达细胞。 全细胞膜片钳测量通道电流抑制和浓度响应;按研究要求选择生理温度 hERG 检测。 单通道结果有助于识别复极相关风险线索,不能单独判断药物对心肌复极的净效应或临床风险。
心肌细胞的复极或节律是否改变? 人源 iPSC 心肌单细胞或适配的贴壁细胞群。 用膜片钳动作电位或电压成像观察动作电位时程(APD)、波形与节律。 细胞动作电位时程不等于临床 QT 间期;解读时需考虑搏动频率、起搏和记录条件。
钙处理或收缩功能哪里发生了变化? 人源 iPSC 心肌细胞,按检测方式选择单细胞或适配的贴壁细胞群。 用钙成像观察钙瞬变幅度、上升和衰减;结合收缩与舒张测量,必要时加入电活动记录。 可区分不同功能环节的变化,不能单凭这些结果认定分子靶点。分析逐搏时序需可靠的时间对齐。
不同区域的活动和信号传播是否一致? 需要研究三维空间特征、且尺寸和成像条件适配的心脏类器官。 用类器官钙成像比较区域钙瞬变、节律及适宜条件下的信号传播。 探针进入、组织厚度和可观察范围会影响解释;局部钙信号不能直接代表整个类器官的电传导。

检测示例:心脏类器官的钙信号

同一组织内,不同区域的钙信号可能在幅度、时间或节律上有所差异。空间信号图展示区域分布,钙瞬变曲线呈现随时间的变化。若要进一步区分变化来自电活动、钙处理还是机械响应,可按样本条件补充电压成像或收缩测量。

心脏类器官钙荧光图像、空间信号图与钙瞬变曲线
心脏类器官钙成像检测示例,展示可观察的空间分布和时间变化。图例不代表特定药物的安全性结论。来源:心脏类器官钙成像。

体外心脏安全性研究怎样设计和解读?

研究开始前,先确定主要指标,并记录细胞来源与批次、培养条件、给药浓度和观察时间。配套的溶剂对照、参考化合物和预先定义的信号质量标准,可以帮助判断变化是药物效应,还是基线波动、样本状态或记录条件造成的。不同实验若要横向比较,处理条件和分析窗口也应尽量一致。[3]

以收缩减弱为例:若钙瞬变和收缩都发生变化,可以进一步研究钙处理是否参与;若钙瞬变变化不明显,可考虑收缩环节本身,也要检查测量灵敏度及样本状态。将电活动、钙瞬变和收缩放在一起看,是电–钙–收缩偶联评价的用处。若记录来自匹配但不同步的样本,可以比较响应趋势,不据此推断逐搏时序或确定分子靶点。

体外结果可用于早期候选物比较、后续实验设计和机制研究,不单独构成临床风险判断,也不意味着能直接替代特定申报研究。星智云开(SparkMind)提供人源 iPSC 心肌细胞和适配心脏类器官的电生理、功能成像与收缩检测,具体组合依据样本条件与研究目标确定。

参考资料

  1. U.S. Food and Drug Administration. Roadmap to Reducing Animal Testing in Preclinical Safety Studies. 2025.
  2. U.S. Food and Drug Administration. General Considerations for the Use of New Approach Methodologies in Drug Development. Draft guidance, March 2026.
  3. U.S. Food and Drug Administration. E14 and S7B Clinical and Nonclinical Evaluation of QT/QTc Interval Prolongation and Proarrhythmic Potential--Questions and Answers (R1). Final guidance, October 2026. S7B Q&As 1.5 and 2.1-2.5.
  4. Takahashi K, et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 2007;131(5):861-872.
  5. Blinova K, et al. International Multisite Study of Human-Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes for Drug Proarrhythmic Potential Assessment. Cell Reports. 2018;24(13):3582-3592.
  6. Hofbauer P, et al. Cardioids reveal self-organizing principles of human cardiogenesis. Cell. 2021;184(12):3299-3317.e22.

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